Résumé
Allophylus africanus P.Beau (Sapindaceae) est un arbuste ou petit arbre largement répandu en Afrique, dont les feuilles sont principalement utilisées en médecine traditionnelle. Cette revue systématique avec synthèse narrative (SWiM) évalue ses usages ethnobotaniques ainsi que ses activités anti-inflammatoires, antioxydantes et antidrépanocytaires. Une revue systématique couvrant la période 2000–2025 a été conduite selon PRISMA 2020, avec une description de la recherche conforme aux principes de PRISMA-S. PubMed et Google Scholar ont été interrogés; ResearchGate et les listes bibliographiques ont servi de sources complémentaires. Les études directement consacrées à A. africanus et rapportant des données ethnobotaniques, phytochimiques, pharmacologiques ou toxicologiques ont été retenues. En raison de l’hétérogénéité des modèles, des extraits, des doses et du défaut de données de dispersion, les résultats ont été synthétisés sans méta-analyse selon une approche inspirée de SWiM. Les feuilles étaient l’organe le plus étudié et les usages rapportés concernaient surtout la douleur, l’inflammation, les rhumatismes, les plaies, les ulcères et certaines affections infectieuses ou digestives. Les flavonoïdes, tanins, alcaloïdes, terpènes, phytostérols, acides gras, tocotriénols et peptides alcaloïdes dominaient le profil chimique. Trois études soutenaient une activité anti-inflammatoire, dont deux modèles animaux et une étude mécanistique in vitro. Cinq études rapportaient une activité antioxydante, dont une portant sur un tocotriénol isolé, avec une forte dépendance à l’organe, au solvant et au protocole. Aucune étude primaire n’évaluait directement l’effet antidrépanocytaire. La certitude des preuves était faible à très faible en raison du petit nombre d’études, de l’hétérogénéité, de l’indirectivité et des lacunes de rapportage. Les données disponibles soutiennent un potentiel anti-inflammatoire et antioxydant de A. africanus, mais ne permettent ni une estimation quantitative groupée ni une conclusion clinique. L’activité antidrépanocytaire demeure une hypothèse de recherche et ne doit pas être présentée comme démontrée.
Références
1. Adeniyi, O., Baptista, R., Bhowmick, S., Cookson, A., Nash, R. J., Winters, A., Shen, J., & Mur, L. A. J. (2022). Isolation and characterisation of quercitrin as a potent antisickle cell anaemia agent from Alchornea cordifolia. Journal of Clinical Medicine, 11(8), 2177. https://doi.org/10.3390/jcm11082177
2. Ayuba, S. A., & Onu, A. (2024). Phytochemical analysis and antisickling activity of some medicinal plants from Sokoto, Nigeria. UMYU Scientifica, 3(3), 130–140. https://doi.org/10.56919/usci.2433.015
3. Balogun, O. S., Liu, S., Zhong, Z., & Liu, Z. (2023). Novel anti-diabesity peptide alkaloids from Allophylus africanus P.Beau P. Beauv. Current Bioactive Compounds, 19(5), 2–16. https://doi.org/10.2174/1573407218666220930095
4. Balogun, O. S., Oladosu, I. A., & Liu, Z. (2014). Chemical compositions and antioxidant potential of essential oils from leaves and flowers of Allophylus africanus P.Beau. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 17(5), 769–775. https://doi.org/10.1080/0972060X.2014.895176
5. Balogun, O. S., Oladosu, I. A., & Liu, Z. (2016). Fatty acid profile and in vitro biological activities of Allophylus africanus P.Beau (P. Beauv.). Journal of Herbs, Spices & Medicinal Plants, 22(3), 238–246. https://doi.org/10.1080/10496475.2016.1193587
6. Chifundera, K. (2001). Contribution to the inventory of medicinal plants from the Bushi area, South Kivu Province, Democratic Republic of Congo. Fitoterapia, 72(4), 351–368. https://doi.org/10.1016/S0367-326X(00)00294-X
7. Ekissi, A., Kouamé, K., Koko, A., Koffi, K., & Kati-Coulibaly, S. (2021). Différents usages d’Alchornea cordifolia (Euphorbiaceae) dans la localité de Daloa, Côte d’Ivoire. Journal of Applied Biosciences, 160, 16507–16520.
8. Elusiyan, C. A., & Olugbade, T. A. (2011). Anti-sickling studies of Nigerian plants. Planta Medica, 77(12). https://doi.org/10.1055/s-0031-1282898
9. Ferreres, F., Gomes, N. G. M., Valentão, P., Pereira, D. M., Gil-Izquierdo, A., Araújo, L., Silva, T. C., & Andrade, P. B. (2018). Leaves and stem bark from Allophylus africanus P.Beau P. Beauv.: An approach to anti-inflammatory properties and characterization of their flavonoid profile. Food and Chemical Toxicology, 118, 430– 438. https://doi.org/10.1016/j.fct.2018.05.045
10. Gathirwa, J. W., Rukunga, G. M., Mwitaria, P. G., Mwikwabe, N. M., Kimani, C. W., Muthaura, C. N., Kiboi, D. M., Nyangacha, R. M., & Omar, S. A. (2011). Traditional herbal antimalarial therapy in Kilifi District, Kenya. Journal of Ethnopharmacology, 134, 434–442. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.12.043
11. Hooijmans, C. R., Rovers, M. M., de Vries, R. B. M., Leenaars, M., Ritskes-Hoitinga, M., & Langendam, M. W. (2014). SYRCLE’s risk of bias tool for animal studies. BMC Medical Research Methodology, 14, 43. https://doi.org/10.1186/1471-2288-14-43
12. Ibrahim, F. S., Mohammed, Z., Nuhu, A., Shehu, S., & Ilyas, N. (2018). Acute toxicity and anti-inflammatory activity of hydro-methanol leaves extract of Allophylus africanus P.Beau Beauv. in rats. Journal of HerbMed Pharmacology, 7(2), 119–123. https://doi.org/10.15171/jhp.2018.20
13. Ikenna, C., Theodora, C., Odoh, U., & Ugwuoke, C. (2023). Phytochemical and antiulcer properties of Allophylus africanus P.Beau P. Beauv. (Sapindaceae) leaf. Asian Journal of Research in Medical and Pharmaceutical Sciences, 12(1). https://doi.org/10.9734/ajrimps/2023/v12i1208
14. Ilagouma, A. T., Amadou, I., Issaka, H., Ilagouma, O. A. T., & Ikhiri, K. (2019).
15. Preliminary study to identify anti-sickle cell plants in Niger’s traditional pharmacopoeia and their phytochemicals. Journal of Medicinal Plants Research, 13(19), 509–517. https://doi.org/10.5897/JMPR2019.6834
16. Kitadi, J. M., Mazasa, P. P., Tshibangu, D. S. T., Kasali, F. M., Tshilanda, D. D., Ngbolua, K. N., & Mpiana, P. T. (2020). Ethnopharmacological survey and antisickling activity of plants used in the management of sickle cell disease in Kikwit City, DR Congo. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2020, Article 1346493. https://doi.org/10.1155/2020/1346493
17. Kitambala, M. M., Mutombo, E. K., Niyibizi, B. N., et al. (2021). The in vitro antisickling effect of purified alkaloids of Cremaspora triflora (Thonn.) K. Schum. and Macaranga schweinfurthii Pax. World Journal of Advanced Research and Reviews, 9(3), 129–137. https://doi.org/10.30574/WJARR.2021.9.3.0074
18. Koroma, L., & Kamara, L. M. (2020). Pharmacognostic investigation, isolation, characterization and confirmation of the structure of phenacetine extracted from the dried powdered leaves of traditional medicinal plant Allophylus africanus P.Beau used for the treatment of pain, flu and headache. International Journal of Engineering Science Technologies, 4(6), 10–29. https://doi.org/10.29121/ijoest.v4.i6.2020.114
19. Kwekowe, C. G., Johnbull, E. O., & Otuokere, I. I. (2021). Isolation and characterization of secondary metabolite from the stem bark extract of Allophylus africanus P.Beau Beauv. (Sapindaceae). Journal of Chemical Society of Nigeria, 46(2). https://doi.org/10.46602/JCSN.V46I2.619
20. Maloba Mwinensenge, J., Mbayo Kitambala, M., Monga Mulunda, M., Dikala Otete, F., Kanda Kabeya, J., Muamba Malangu, L., Ngoy Kihuya, E., & Lumbu Simbi, J.-B. (2025). Enquête ethnobotanique sur les plantes médicinales utilisées dans le traitement des mycoses humaines à Lubumbashi et ses environs, RD Congo. Journal of Applied Biosciences, 206, 21838–21851. https://doi.org/10.35759/JABs.206.4
21. Mohammed, Z. J., Seniere, F., & Abdullahi, Y. H. (2020). Evaluation of the analgesic and anti-inflammatory potential of methanolic leaf extract of Allophylus africanus P.Beau Beauv. (Sapindaceae). Biomedical Journal of Scientific & Technical Research, 25(2), 19040–19045. https://doi.org/10.26717/BJSTR.2020.25.004186
22. Mpiana, P. T., Makelele, L. K., Oleko, R. W., Bokota, M. T., Tshibangu, D. S. T., Ngbolua, K. N., Mbala, M. B., Atibu, E. K., & Nshimba, S. M. (2010). Antisickling activity of medicinal plants used in the management of sickle cell disease in the Tshopo District, DR Congo. Australian Journal of Medical Herbalism, 22(4), 132–137.
23. N’Guessan, K., Tra, B. F. H., & Koné, M. W. (2009). Étude ethnopharmacologique des plantes antipaludiques utilisées en médecine traditionnelle chez les Abbey et Krobou d’Agboville, Côte d’Ivoire. Ethnopharmacologia, 44, 42–50.
24. Ngbolua, K. N. (2012). Évaluation de l’activité antidrépanocytaire et antipaludique de quelques taxons végétaux de la République démocratique du Congo et de Madagascar [Thèse de doctorat, Université de Kinshasa].
25. Ngbolua, K. N., Rafatro, H., Rakotoarimanana, H., Urverg, R. S., Mudogo, V., Mpiana, P. T., & Tshibangu, D. S. T. (2011a). Pharmacological screening of some traditionally used antimalarial plants from the Democratic Republic of Congo compared to their ecological taxonomic equivalents in Madagascar. International Journal of Biological and Chemical Sciences, 5(5), 1797–1804.
26. Ngbolua, K. N., Rakotoarimanana, H., Rafatro, H., Urverg, R. S., Mudogo, V., Mpiana, P. T., & Tshibangu, D. S. T. (2011b). Comparative antimalarial and cytotoxic activities of two Vernonia species: Vernonia amygdalina from the Democratic Republic of Congo and Vernonia cinerea subsp. vialis, endemic to Madagascar. International Journal of Biological and Chemical Sciences, 5(1), 345–353.
27. Okoye, N., Nwokoye, N. J., Muobike, C. M., et al. (2024). Comparative phytochemical and antioxidant studies of the hexane and ethyl acetate fractions of the methanol extracts of the stem bark of Allophylus africanus P.Beau. Journal of Current Biomedical Research, 4(6), 1884–1892. https://doi.org/10.54117/jcbr.v4i6.2
28. Oladosu, I. A., Balogun, S. O., & Ademowo, G. O. (2013). Phytochemical screening, antimalarial and histopathological studies of Allophylus africanus P.Beau and Tragia benthamii. Chinese Journal of Natural Medicines, 11(4), 371–376. https://doi.org/10.1016/S1875-5364(13)60054-0
29. Oladosu, I. A., Balogun, S. O., & Liu, Z. Q. (2015). Chemical constituents of Allophylus africanus P.Beau. Chinese Journal of Natural Medicines, 13(2), 133–141. https://doi.org/10.1016/S1875-5364(15)60017-6
30. Page, M. J., McKenzie, J. E., Bossuyt, P. M., Boutron, I., Hoffmann, T. C., Mulrow, C. D., et al. (2021). The PRISMA 2020 statement: An updated guideline for reporting systematic reviews. BMJ, 372, n71. https://doi.org/10.1136/bmj.n71
31. Percie du Sert, N., Hurst, V., Ahluwalia, A., Alam, S., Avey, M. T., Baker, M., et al. (2020). The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLOS Biology, 18(7), e3000410. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3000410
32. Sani, I., Ukwuani-Kwaja, A. N., & Haruna, M. (2021). Ethnobotanical survey and in vitro antisickling effect of some selected medicinal plants. Asian Journal of Research in Biochemistry, 9(1), 1–14. https://doi.org/10.9734/AJRB/2021/v9i130190
33. Snijders, M. (2013). Medicinal plants used in the treatment of sickle cell disease in Western Africa [Mémoire de bachelor, Leiden University].
34. Sofidiya, M. O., Jimoh, F. O., Aliero, A. A., Afolayan, A. J., Odukoya, O. A., & Familoni, O. B. (2012). Evaluation of antioxidant and antibacterial properties of six Sapindaceae members. Journal of Medicinal Plants Research, 6(1), 154–160. https://doi.org/10.5897/JMPR11.1364
35. Sterne, J. A. C., Hernán, M. A., Reeves, B. C., Savović, J., Berkman, N. D., Viswanathan, M., et al. (2016). ROBINS-I: A tool for assessing risk of bias in nonrandomised studies of interventions. BMJ, 355, i4919. https://doi.org/10.1136/bmj.i4919
36. Zeutsop, J. F., Zébazé, J. N., Nono, R. N., Frese, M., Chouna, J. R., Lenta, B. N., Nkeng-Efouet-Alango, P., & Sewald, N. (2022). Antioxidant and cytotoxicity activities of δtocotrienol from the seeds of Allophylus africanus P.Beau. Natural Product Research, 36(18), 4655–4665. https://doi.org/10.1080/14786419.2021.2010195
37. Campbell, M., McKenzie, J. E., Sowden, A., Katikireddi, S. V., Brennan, S. E., Ellis, S., et al. (2020). Synthesis without meta-analysis (SWiM) in systematic reviews: Reporting guideline. BMJ, 368, l6890. https://doi.org/10.1136/bmj.l6890
38. Dharmani, P., Mishra, P. K., Maurya, R., Chauhan, V. S., & Palit, G. (2005). Allophylus serratus: A plant with potential anti-ulcerogenic activity. Journal of Ethnopharmacology, 99(3), 361–366. https://doi.org/10.1016/j.jep.2005.01.011
39. Jain, S., Sinha, V., Kirar, N., & Dhuria, R. S. (2014). Antioxidant, analgesic and antiinflammatory activities of Allophylus cobbe. American Journal of Pharmacology and Toxicology, 9(3), 223–231. https://doi.org/10.3844/ajptsp.2014.223.231
40. Jemal, A., et al. (2022). Antioxidant activity and phytochemical investigation of Allophylus serratus. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 15(1), 51–69. https://doi.org/10.35516/jjps.v15i1.291
41. Rethlefsen, M. L., Kirtley, S., Waffenschmidt, S., Ayala, A. P., Moher, D., Page, M. J., & Koffel, J. B. (2021). PRISMA-S: An extension to the PRISMA Statement for reporting literature searches in systematic reviews. Systematic Reviews, 10, 39. https://doi.org/10.1186/s13643-020-01542-z
42. Schünemann, H. J., Brożek, J., Guyatt, G., & Oxman, A. D. (Eds.). (2024). GRADE handbook for grading quality of evidence and strength of recommendations. GRADE Working Group.
43. Yesuf, A., & Asres, K. (2013). Wound healing and anti-inflammatory properties of Allophylus abyssinicus (Hochst.) Radlk. Phytopharmacology, 4(2), 442–453.
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